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동물 세포 배양을 위한 배지 개발

*성*
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최초 등록일
2008.12.20
최종 저작일
2008.12
36페이지/ MS 워드
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소개글

생물 의약품의 여러 가지 생산 기술 가운데 하나인 동물 세포 산업화 기술은 유전자가 조작된 인간 및 동물세포를 대량으로 배양하여 고 부가가치의 생물의약품을 생산하는 기술로 최근에는 gene therapy 및 cell therapy 기법의 개발로 인해 산업화 기술로서의 중요성이 더욱 강조되고 있다.

목차

요약 (p2)

서론 (p3-p14)
동물세포
1) 동물세포 배양 (p3-p4)
2) 배지 (p4-p14)

본론 (p15-p22)
1. 배지 조성을 위한 최적화 조건 (p15-p16)
2. 고농도 배양을 위한 perfusion 방법 (p16)
3. 관련 기술 (p17-p22)
1) 고농도 세포 배양을 위한 세포 직접 장치 개발 (p17)
2) 쥐 하이브리도마 세포 배양을 위한 무혈청 배지 개발 (p17-p20)
3) CHO 세포 무혈청 연속 배양 체계를 이용한 재조합 Factor8 개발 (p20-p21)
4) Sphingosylhposphorylcholine and lysophosphaticylcholine( G-단백질 쌍 수용 기관과 수용 중재 신호 변환) (p21-p22)

결론
(P23-p35)

참고 문헌
(P36)

본문내용

1) 동물 세포 배양
고등한 생물의 세포를 분리해내서 배양하는 일은 하등 한 미생물의 경우보다 매우 어려운 일이다. yeast나 bacteria는 자라는 속도가 매우 빨라서 어떠한 미생물의 세포의 경우는 20분마다 분열을 하고, 비교적 간단한 조성의 배지에서도 잘 자란다. 동물 세포의 경우에는 자라는 속도가 매우 느려서 18시간마다 한 번 분열을 하는 정도이고, 특정 환경을 맞춰주어야 하며, 다른 미생물보다 특히 contamination을 주의해야 한다. 가장 중요한 점은 배양하려는 동물 세포의 특징을 잘 알아야 한다는 것이다. 세포에 따라 media에 특별히 첨가해주어야 하는 것도 있다.

참고 자료

1. Su, W.W., Asali, E.E. and Humphrey., “Anchusa officinalis: Production of rosmarinic acid in perfusion cell culture”(1994), Biotechnol. Agri. Forest., 26, 1-19
2. Su, W.W. and Humphrey , A.E., “Production of rosmarinic acid from perfusion culture of Anchusa officinalis in membrane-aerated bioreactor”(1991). Biotechnol. Lett.,12(12), 889-892
3. James E. Bailey and David F. Ollis., “Biochemical engineering fundamentals”, Second edition. P.722-749
4. Hayashi, I. and G. H Sato; Nature, 259 132(1976)
5. Barnes, D. and G. Sato: Anal .Biochen., 102, 255(1980)
6. Merten, O.W.. Trends in Biotechnology, 5, 230(1987)
7. Griffiths B.(1991)Products from animal cells. In: Mammalian cell biotechnology. Apractica approach. (ed. Butler M.)IRL Press. 207-235.
8. Kaufman R. J.m, Wasley L. C and Dorner A.F(1988) Synthesis, processing, and secretion of recombinant human factor 8 expressed in mammalian cells. J.Biol. Chem. 263. 6352-6362.
9. Thomas G. Pretlow 2 and Theresa P. Pretlow.,(1982) “Sedimentation of cells : An overview and discussion of artifacts” Cell separation methods and selected applications, p.41~60, Academic press, New York
10. James E. Bailey and David F.Ollis., “Biochemical engineering fundamentals”, Second edition, p. 722~749
11. 고농도 세포 배양을 위한 세포 집적 장치 개발 , 송구영, 임동준, 김익환, 영남대학교 화학공학 및 공업 화학부, 고려대학교 생명 공학원
12. 쥐 하이브리도마 세포 배양을 위한 무혈청 배지개발 –최적 배지 성분의 결정-
조보연, 최태부, 한국 과학 기술 연구원 유전공학 센터 ‘건국대학교 미생물 공학과’
13. CHO 세포 무혈청 연속 배양 체계를 이용한 재조합 Factor8 개발, 변태호, 이수영, 최병욱, 김진만, 오한규, 이종민, 이정식, 박송용, 박홍우 ㈜녹십자 종합 연구소 동물 세포 공학팀, *한양대학교 공과대학 화학 공학과
14. Shpingosylphosphorylcholine and lysophosphatidylcholine : G protein-coupled receptors and receptoer-mediated signal transduction, Yan Xu
Department of Cancer Biology, Lerner Research Institute, Cleveland Clinic Foundation, 9500 Euclid Avenue, Cleveland. OH 44195, USA
Department of Gynecology and Obsetrics, Cleveland Clinic Foundation, 9500 Euclid Avenue, Cleveland, OH 44195. USA
15. Use of Nonionic Surfactants for Effective Supply of Phsphatidic Acid in Serum-Free Culture of Chinese Hamster Ovary Cells
KENTARO SAKAI, CHISA HAYASHI, HIDEKI YAMAJI, and HIDEKI FUKUDA
Division of Molecular Science, Graduate School of Science and Technology, Kobe University, 1-1 Rokkodai, Nada, Kobe 657-8501 and Department of Chemical Science and Engineering, Faculty of Engineering. Kobe University, 1-1 Rokkodai, Nada, Kobe 657-8501, Japan
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